Проблема микробиологической чистоты лекарственных препоратов

Автор работы: Пользователь скрыл имя, 03 Декабря 2012 в 22:08, курсовая работа

Краткое описание

Цель данной работы - изучить проблемы микробиологической загрязненности лекарственных препаратов.
Для достижения поставленной цели потребовалось решить следующие задачи:
• изучить все виды лекарственных форм и выявить наиболее подверженные микробной контаминации;
• назвать возможные методы очистки мероприятия субстанций и лекарственных препаратов;
• осветить некоторые методики проверки лекарственных препаратов на микробиологическую чистоту.

Прикрепленные файлы: 1 файл

Проблема микробиологической чистоты лекарственных препоратов.doc

— 121.50 Кб (Скачать документ)

В зависимости от дизайна индикаторы могут быть раздельными, в которых микробная тест-культура после стерилизационного цикла переносится в стерильную питательную среду для последующего инкубирования, и автономными, в которых тест-культура, нанесенная на инертный носитель, и питательная среда (в отдельной ампуле) помещены в одну упаковку и стерилизуются вместе. После стерилизации ампула со средой разрушается, и индикатор инкубируется. Биологические индикаторы раздельного типа рекомендуется применять в случае невозможности размещения автономных индикаторов в (на) стерилизуемом изделии, при оценке надежности стерилизации отдельных частей стерилизуемого изделия, определения наиболее труднодоступных для стерилизации мест. Существенным недостатком биоиндикаторов раздельного типа является необходимость создания асептических условий для переноса тест-организма после стерилизации в питательную среду, чтобы избежать контаминации индикатора. Причем риск получения ложного результата всегда остается. Автономные биоиндикаторы лишены этого недостатка. Но у них имеется свой, связанный с возможностью уменьшения чувствительности питательной среды при температурной (паровая, воздушная) стерилизации. Наличие микробного роста в биоиндикаторе может определяться после инкубирования по увеличению мутности микробной суспензии, по изменению окраски рН-индикатора или то и другое одновременно.

В последние годы разработаны индикаторы, в которых наличие микроорганизмов, сохранивших жизнеспособность после стерилизации, определяется по флуоресценции. Эти индикаторы имеют значительное преимушество, т. к. из-за высокой чувствительности флуоресцентного способа индикации ответ о качестве стерилизации могут давать в течение 1 часа после окончания цикла стерилизации вместо 24-48 часов.

Таким образом, БИ относятся к типу интегрированных многопараметровых индикаторов, в которых все факторы летальности одинаково влияют как на тест-организм в индикаторе, так и контаминирующую микрофлору на стерилизуемом изделии.

При создании БИ выбирается тест-организм, резистентность которого к конкретному стерилизационному процессу превышает резистентность контаминирующей микрофлоры. Кроме того, количество этих микроорганизмов в БИ должно превышать суммарную популяцию на стерилизуемых изделиях. А так как кинетика гибели тест-объекта и контаминанта подчиняется одному закону, то соблюдение требований по резистентности и количеству микроорганизмов в БИ предусматривает большой запас вероятности полной гибели контаминирующей микрофлоры.

Помещенные внутри стерилизуемых изделии БИ могут свидетельствовать и документально подтверждать достижение критических параметров стерилизации непосредственно в изделиях.

Таким образом, в настоящее время существует достаточное количество средств контроля стерилизации для объективного суждения о ее надежности, но отсутствует система их оптимального использования.

Под системой контроля стерилизации подразумевается комплекс методов с указанием объема и периодичности их проведения и описанием порядка действий персонала в различных ситуациях. Системы контроля должны быть адекватны методу стерилизации, типу стерилизатора и его оснащенности штатными контрольно-измерительными устройствами, степени физического и морального износа. Контролю должны подвергаться все критические параметры метода стерилизации.

Персонал, выполняя предусмотренные системой контроля мероприятия, должен получить возможность сделать заключение о соответствии стерильной продукции требуемым нормам.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Выводы

Все документы Минздрава и Госсанэпиднадзора до настояшего времени требуют от пользователей и морально устаревшего и современного автоматического стерилизатора одинакового контроля. При этом не учитывается конструктивный уровень, техническое состояние и степень физического износа аппаратуры, уровень технического обслуживания, степень подготовки персонала.

Качество некоторых выпускаемых (к примеру, мягких) лекарственных средств остается низким, что определяет неконкурентоспособность нашей  продукции.

Таким образом, прежде чем контролировать качество лекарственных средств по показателю «Микробиологическая чистота» необходимо определить:

  • вид лекарственной формы (твердая, жидкая, мягкая, газообразная)
    1. термолабильный
    2. термостабильный
  • оценить правильность выбранного метода стерилизации,
  • температурный и временной режим (если это тепловая стерилизация),
  • объем исследуемой продукции
  • надежность средств контроля стерилизации
  • современность выбранного метода контроля стерилизации

 

 

 

 

 

 

Список литературы

  1. Государственная фармакопея СССР: вып. 1. Общие методы анализа / МЗ СССР. – 11-е изд., доп. – М.: «Медицина», 1987.
  2. Государственная фармакопея СССР: вып. 2. Общие методы анализа / МЗ СССР. – 11-е изд., доп. – М.: «Медицина», 1987.
  3. Журнал: «Дезинфекционное дело » № 2'98 статья «СРЕДСТВА КОНТРОЛЯ СТЕРИЛИЗАЦИИ» Г.И. Рубан
  4. Журнал «Химико- фармацевтический журнал» издательство «Фолиум».Выпуск №1 том 37.
  5. Фармацевтическая технология. Технология лекарственных форм. Под ред. И. И. Краснюка и Г.В. Михайловой. «МОСКВА» 2006.
  6. http://bigmeden.ru/
  7. http://lekarstvennik.ru/stati/myagkie-lekarstvennye-formy
  8. http://www.dissercat.com

 




Информация о работе Проблема микробиологической чистоты лекарственных препоратов