Асептика и антисептика

чередовать использование антисептиков, содержащих активно действующие вещества с разными механизмами антимикробного действия;

тщательность  выполнения техники проведения обработки;

соблюдать последовательность действий, дозировку препарата и  экспозиции обработки на каждом этапе.

 

Местная и  общая антисептика.

В зависимости  от метода применения антисептических  средств различают местную и  общую антисептику. Местная антисептика, в свою очередь, делится на поверхностную (использование присыпок, мазей, аппликаций, промывание ран и полостей) и глубокую (инъекция препарата в области раны или воспалительного очага - обкалывания, блокада).

Под общей  антисептикой понимают насыщение организма  антисептическим средством (антибиотики, сульфаниламиды), поступающим в очаг инфекции с током крови или  воздействующим на микрофлору, содержающуюся в крови.

Применяя  тот или иной вид антисептики, следует учитывать его возможные  побочные действия, которые в ряде случаев могут оказаться опасными, вызывая интоксикацию (химическая антисептика), повреждение жизненно важных анатомических  образований (механическая антисептика), фотодерматиты (физическая антисептика), аллергические реакции, дисбактериоз, кандидомикозы (биологическая антисептика) и т.д.

Средства, применяемые  для антисептики, должны отвечать следующим  требованиям:

обладать  широким спектром действия (бактери-, вирули-, фунги-, туберкулоцидным);

быстро достигать  эффекта;

достигать полного  уничтожения транзиторной микрофлоры;

добиваться  снижения обсемененности постоянной микрофлорой  до безопасного уровня;

обладать  достаточно продолжительным действием  после обработки (в течение трех часов);

должны отсутствовать  кожно-раздражающий, аллергенный, канцерогенный, мутагенный и другие побочные эффекты;

обеспечивать  медленное развитие резистентности микроорганизмов; быть экономически доступными.

Асептика.

Асептика - метод  профилактики (стерилизация инструментов и др.), направленный против проникновения  микробов в рану, ткани или полости  тела при операциях и т.д.

Профилактика  имплантационной инфекции заключается  в тщательной стерилизации приборов, шовного материала, дренажей, эндопротезов и т. п. Эта инфекция может быть дремлющей и проявлять себя через длительный период времени, при ослаблении защитных сил организма человека.

Особое значение профилактика имеет при пересадке  органов и тканей, так как применяются  методы для ослабления защитных сил  организма. Асептика - закон хирургии. Достигается она применением  физических факторов и химических веществ.

Высокая температура, вызывающая денатурацию белков микробной  клетки, наиболее часто применялась  в прежнее время.

Чувствительность  микробов к высокой температуре  зависит от их вида, штамма и состояния  микробной клетки (делящиеся и  молодые бактерии более чувствительны, споры более устойчивы к высокой  температуре). В щелочной и кислой среде поражаемость микробных клеток высокая. Холод задерживает размножение микробных клеток, не оказывая выраженного бактерицидного действия.

Ультрафиолетовые  лучи способны поражать микробов, находящихся  в воздухе, на коже, тканях человека, на стенах и полу помещений. Гамма-лучи - это радиоактивные изотопы .Стерилизация проводится в специальных камерах. Стерилизуется белье, шовный материал, системы для переливания крови и др. Работают специально обученные люди, обеспеченные мощными защитными приспособлениями. Особенно полезна лучевая стерилизация предметов из пластмасс, не выдерживающая высокой температуры и пара под давлением.

Термическая стерилизация, то есть высокой температурой, является основным методом обеззараживания, применяемого в медицинской практике. Верхняя граница вегетирующих микроорганизмов 50 °С, а спор столбнячной палочки -- в кипящей воде (до 60 мин.) Наиболее эффективным видом стерилизации любой формы бактерий является воздействие пара под давлением. Через 25 мин погибает любая инфекция, а наиболее распространенная - через 1-2 мин (132 °С). Обжиг применяется лишь в лабораторной практике для стерилизации пластиковых игл и петель, используемых в бактериологических лабораториях и в чрезвычайных ситуациях - при угрозе жизни больного.

Стерилизация  сухим жаром проводится в сухожаровых стерилизаторах при температуре 180-200 °С. Стерилизуются инструменты, посуда и др. Этот вид стерилизации широкое распространение нашел в зубоврачебной практике.

Кипячение производится в кипятильниках: переносных и стационарных. Используют кипяченую дистиллированную воду с добавлением гидрокарбоната натрия из расчета 2,0 г на 100,0 г воды. Получается 2%-й раствор и температура  кипения воды увеличивается на 1-2 °С.

Стерилизация  паром под давлением проводится в автоклавах. Они могут быть стационарные и походные. В зависимости от давления пара (кгс/см2) температура поднимается  до строго определенных цифр, например, при давлении пара 1,1 кгс/см2 температура  в автоклаве поднимается до 121,2 °С; при 2 кгс/см2 - до 132,9 °С и т. д. Отсюда и экспозиция стерилизации от 60 мин до 15 мин. Проводится контроль стерильности. Он может быть бактериологическим, техническим и термическим. Бактериологический метод самый точный, но результат выдается слишком поздно. Берут образцы стерилизовавшегося материала и сеют на питательные среды. Технические методы используются при установке нового автоклава. Термические методы используются повседневно. Они основаны либо на изменении цвета вещества, либо на плавлении вещества.

Проба Микулича: на белой фильтровальной бумаге пишут  простым карандашом "стерильно" и смазывают поверхность бумажки 10%-м раствором крахмала. Когда  бумажка подсохнет, ее смазывают раствором Люголя. Бумажка темнеет, слово "стерильно" не видно. Ее закладывают в толщу стерилизуемого материала в автоклав. При 100 °С крахмал соединяется с йодом и слово "стерильно" снова становится видно. Экспозиция должна быть не менее 60 мин.

Более эффективны пробы с порошкообразными веществами, которые плавятся при определенной температуре: сера -- при 111-120 °С, резорцин - 110-119 °С; бензойная кислота - 121 °С, мочевина - 132 °С; фенацетин - 134-135 °С.

Для контроля сухожаровой стерилизации: тиомочевина - 180 °С; янтарная кислота - 180-184 °С; аскорбиновая кислота - 187-192 °С; барбитал - 190-191 °С; пилокарпина гидрохлорид - 200 °С.

Понятие и  разновидности химической стерилизации.

Химические  вещества, применяемые для стерилизации, должны быть бактерицидными и не портить  инструменты и материалы, с которыми они соприкасаются.

В последнее  время все шире стала использоваться стерилизация холодным способом, с  помощью антисептических веществ. Причиной этого служит то обстоятельство, что в медицинской практике используются предметы, изготовленные из пластических масс. Их нельзя стерилизовать термическими методами. К ним относятся аппараты искусственного кровообращения (АИК), аппараты для наркоза, искусственной  вентиляции легких и т. д. Разбирать  такие аппараты сложно и трудно, да и не под силу медицинским работникам. Стало быть нужны методы, позволяющие стерилизовать аппарат в целом, виде либо разобранном на крупные узлы.

Химическую  стерилизацию можно провести либо с  помощью растворов, включая аэрозоли (растворы ртути, хлора и т. д.), либо газами (пары формалина, смесь ОБ).

Стерилизация  растворами химических веществ

Карболовая  кислота входит в тройной раствор (раствор Крупенина). Им стерилизуют  режущие инструменты и предметы из пластмасс. В нем хранятся простерилизованные иглы, скальпели, корнцанги, полиэтиленовые трубки.

Лизол с зеленым  мылом используется для помывки  стен, полов, мебели операционно-перевязочного  блока, а также для обработки  инструментов, резиновых перчаток, предметов, загрязненных гноем или  калом во время операции.

Сулема (дихлорид ртути) 1 : 1000, 1 : 3000 Стерилизуются перчатки, дренажи и другие предметы.

Оксицианид ртути 1 : 10000 применяется для стерилизации мочеточниковых катетеров, цистоскопов и других инструментов с оптикой.

Диоцид - препарат ртути, сочетает в себе антисептические и моющие свойства. Некоторые используют для обработки рук хирурга - руки моют в тазу раствором 1 : 3000, 1 : 5000 - 6 мин.

 

Этиловый  спирт применяется для стерилизации режущих инструментов, резиновых  и полиэтиленовых трубок, 96%-м спиртом  дубят руки хирурги перед операцией (см. подготовка рук хирурга).

Хотя 70%-й  спирт бактерициднее 96%-го, однако спорообразная инфекция не погибает длительное время. Возбудители газовой гангрены и споры сибирской язвы могут сохраняться в спирте в течение нескольких месяцев (Н. С. Тимофеев и соавт., 1980 г.).

Для увеличения бактерицидности спиртовых растворов  к ним добавляются тимол (1 : 1000), 1%-й раствор бриллиантового зеленого (раствор Баккала), формалин и др.

Давно используются бактерицидные свойства галогенов. Н. И. Пирогов применял йод спиртовый 2%-й, 5%-й и 10%-й, еще не зная о существовании микроорганизмов. Йод обладает бактерицидным и спороцидным эффектом. Он и ныне не утратил своего значения. Однако чаще используют его комплексные соединения с поверхностью - активными веществами, так называемыми. йодофорами, к которым относятся йодонат, йодопиродон, йодолан и др. Они чаще применяются для обработки рук хирурга и операционного поля.

Соединения  хлора издавна используются для  дезинфекции (хлорная известь) и  стерилизация (гипохлорид натрия, хлорамин и др.). Бактерицидность этих препаратов зависит от содержания в них активного хлора. В хлорамине активного хлора 28-29 %, а дихлоризоциануровой кислоте - 70-80 %, гипохлориде натрия - 9,5 %.

Перекись  водорода (33 % перекись водорода - пергидроль) в 3 % и 6 % концентрации используется для  стерилизации и дезинфекции Она  безвредна для человека.

Смесь перекиси водорода с муравьиной кислотой, предложенная И. Д. Житнюком и П. А. Мелехоым в 1970 г., была названа первомуром. В процессе приготовления С-4 образуется надмуравьиная кислота - она и является действующим началом. Используется для обработки рук хирурга или стерилизации инструментов (способ приготовления С-4, см. Практическое руководство по общей хирургии).

В Чехословакии предложили перстерил для стерилизации резиновых и полиэтиленовых трубок.

В России выпущен бета-пропиолактон. В концентрации 1 : 1000 синегнойная палочка в 2%-м растворе погибает в течение 10 мин.

Стерилизация  газами

Стерилизация  газами достаточно перспективна. Она  не повреждает стерилизуемых объектов, не изменяет их свойств.

Наибольшее  практическое значение имеет стерилизация парами формалина. Стерилизуются цистоскопы, катетеры и другие предметы в стеклянных цилиндрах.

Широко используется окись этилена. Бактерицидное действие происходит за счет алкилирования протеинов бактерий. Окись этилена растворима в воде, спирте, эфире. Применяются автоматические газовые стерилизаторы МСВ - 532 с полезным объемом 2,3 л. При концентрации окиси этилена 555 мг/л стерильность тест - объектов достигается через 2 - 4 часа. При этом через 1 час погибают стрептококк, кишечная палочка, синегнойная палочка. Через 2 часа погибают микрококк и через 4 - 7 часов стафилококк. Наиболее резистентны сенная палочка и плесневой грибок, что связано с большим содержанием в них липидов. При сокращении экспозиции до 3-х часов концентрацию препарата увеличивают до 8500 - 1000 мг/л. В связи с тем, что окись этилена взрывоопасна ее чаще всего используют в смеси с инертными газами (10% окиси этилена и 90% углекислоты). Эта смесь в литературе обозначается как картокс или карбоксид. Активность окиси этилена возрастает при повышении температуры (в 2,74 раза на каждые 100 oС повышения температуры). Обычный температурный режим 45 - 65 oС с часовой экспозицией и концентрацией препарата 1000 мг/л С помощью газовой стерилизации следует обрабатывать лишь те объекты, которые не выдерживают стерилизацию в автоклаве и сухожаровой камере. Все предметы, которые подверглись воздействию окиси этилена должны проветриваться в течение 24 - 72 часов.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Список литературы:

Бородин Ф.Р.. Избранные лекции. М.: Медицина, 1961.

Заблудовский П.Е. История отечественной медицины. М., 1981.

Зеленин С.Ф. Краткий курс истории медицины. Томск, 1994.

Сточник А.М. Избранные лекции по курсу истории медицины и культурологии. – М., 1994.

Сорокина Т.С. История медицины. –М.,1994.

Справочник врача общей практики/ Н. П. Бочков, В. А. Насонов, Н. Р. Палеева.Москва: Эксмо-Пресс, 2002.