Методы стерилизации

1.5.Химическая стерилизация.   
      Позволяют стерилизовать оптические изделия, радио- и электронную аппаратуру, а также изделия из термонестойких материалов, металла, стекла. Стерилизация эффективна в том случае, когда химическое средство поглощается стерилизуемым объектом. Химические вещества в растворенном и особенно в газообразном состоянии обладают незначительной скоростью проникновения в стерилизуемый объект, что требует более длительной стерилизационной выдержки и очень тщательной предстерилизационной очистки пористых материалов. Недостатком метода является также необходимость нейтрализации или дегазации химических веществ, оставшихся в стерилизуемых объектах. Растворами химических препаратов нельзя стерилизовать изделия из влагонестойких материалов.  
Основные пути воздействия химических веществ: 

1. изменение осмотических  свойств клетки   
2. разрушение окислительных и других ферментов клетки;   
3. окисление протоплазмы клетки;   
4. коагуляция белков оболочки и протоплазмы клетки .  
Химическая стерилизация осуществляется:   
1. растворами;   
2. Газами .  
        Для стерилизации растворами чаще других применяются дезоксон-1 (надкислота) и водорода пероксид. Проводится стерилизация в неповрежденных эмалированных, стеклянных, пластмассовых сосудах. При стерилизации учитывается концентрация действующего химического агента, температура стерилизующего раствора, время стерилизационной выдержки.  
Например:  
1. при стерилизации дезоксоном-1 температура стерилизующего раствора должна быть не менее 18 °С, время стерилизационной выдержки — 45 мин;  
2. при стерилизации 6%-ным раствором водорода пероксида, температура стерилизующего раствора должна быть не менее 18 °С, время стерилизационной выдержки — 6 ч (при температуре 50 °С время выдержки сокращается до 3 ч).  
Необходимо полностью погружать изделия в стерилизующий раствор, а после стерилизации промывать в стерильной воде в асептических условиях. Для стерилизации газами и аэрозолями используются оксиды этилена и пропилена, полиэтиленоксиды, смеси этилена оксида с углерода диоксидом или метилом бромистым и др.   
       Режим стерилизации газами зависит от многих факторов — свойств стерилизуемого материала, его толщины, проницаемости упаковки, а также индивидуальной чувствительности различных микроорганизмов к воздействию газов. Газы подаются в стерилизуемую среду при давлении до 2 кгс/см2, время стерилизации составляет от 4 до 20 ч.   
Например, для уничтожения стафилококков концентрация газа (этилена оксида) в воздухе должна составлять до 1000 мг/м3 в течение 6 ч, а для стрептококков концентрация газа снижается до 500 мг/м3 в течение того же времени. 

1.6.Пероксидно-плазменная стерилизация. 

Самый эффективный способ низкотемпературной стерилизации медицинских      изделий.   
Низкотемпературная пероксидно-плазменная стерилизация представляет собой новый способ стерилизации медицинских изделий.  
    Данный метод стерилизации применяют как альтернативу низкотемпературной газовой стерилизации окисью этилена и стерилизации в парах формальдегида. Использование окиси этилена все более и более ограничивают из-за высокой токсичности стерилизующего агента и необходимости последующей длительной вентиляции стерилизованных изделий.Стерилизация проводится в сухой атмосфере при температуре 36°С.  
       В качестве стерилизующего агента используются пары 50-58% водного раствора пероксида водорода и его низкотемпературная плазма. Сочетание этих факторов позволяет проводить процесс всего за 35-36 мин.  
Для реализации метода используют пероксидно-плазменные стерилизаторы, размещаемые в ЦСО или в операционных блоках.   
В плазменном стерилизаторе можно стерилизовать практически всю номенклатуру инструментов и изделий медицинского назначения, включая хирургические, травматологические, офтальмологические, стоматологические ( кроме боров ), микрохирургические инструменты, волоконные световоды, лазерные и световодные излучатели, электрические шнуры и кабели, электрические и электронные устройства, электрофизиологические катетеры, рукоятки инструментов, дыхательные контуры, пластиковые емкости и другие медицинские изделия, стерилизация которых при высокой температуре и влажности невозможна или не рекомендована производителями. Особенно эффективно применение данного метода для стерилизации изделий из термолабильных материалов и материалов, склонных к активной коррозии. Метод плазменной стерилизации можно использовать для стерилизации труднодоступных и подвергнутых финишной обработке поверхностей.

Плазменная стерилизация инструментов с тонкими и острыми  рабочими частями позволяет уменьшить  их износ и сохранить работоспособность  на более длительный срок по сравнению  с инструментами, стерилизуемыми в  автоклавах.Использование этого метода дает возможность стерилизовать внутренние поверхности каналов медицинских изделий, например эндоскопов, диаметром до 1 мм и длиной до 3000 мм.

                            2.Виды стерилизаторов. Плюсы и минусы

Существуют стерилизаторы, в которых  используется метод, основанный на применении кратковременного импульсного инфракрасного  излучения, создающего в рабочей  камере температуру 200+3°С.

 Время инфракрасной стерилизации  инструментария в неупакованном  виде составляет от 10 до 25 минут,  включая этапы выхода на режим  и охлаждения. Однако недостатками  такой стерилизации являются  отсутствие упаковки инструментов, повреждающее воздействие на  полимерные материалы и резину, наконец, отсутствие контролирующих  индикаторов.

         В настоящее время появляется различная аппаратура для стерилизации мелких инструментов. В качестве примера можно привести гласперленовый стерилизатор. Он представляет собой камеру, наполненную стеклянными шариками, которые нагреваются до температуры 190-240°С. Такой метод стерилизации используется в стоматологии. Однако и он имеет недостатки: можно применять лишь для мелких цельнометаллических инструментов без упаковки. Они стерилизуются в течение 5-15 секунд. У более крупных инструментов для такой обработки доступна только рабочая часть. А полная их стерилизация даже при увеличении экспозиции не удается. Проблемы возникают и со средствами контроля работы этих стерилизаторов.

Недостатком стерилизации жидкими  химическими средствами является возможное  наличие на очищенном инструментарии следов очистки — остатков токсичных  бактерицидных средств. Кроме этого  необходимо наличие стерильных емкостей, причем не менее двух, со стерильной дистиллированной водой для отмывания  стерилизующего агента. При химической стерилизации может наступать загрязнение  микроорганизмами простерилизованных инструментов. 

Стерилизация газовым методом  более надежна, но технически она  весьма сложна. Для нее необходимы особые помещения, аппаратура, согласование с органами санитарного надзора. Тем не менее иногда этому методу нет альтернативы. Ведь не всякая медицинская техника выдержит температурную и жидкостную стерилизацию. К примеру, оптические инструменты, электрооборудование. Но стерилизация газовым методом с применением окиси этилена и формальдегида в России широко не применяется, так как пока разработки отечественной аппаратуры находятся на начальной стадии. В некоторых ЛПУ используют зарубежные газовые стерилизаторы. Заметим, что это оборудование достаточно дорогое. Плюсом стерилизации газовым методом является возможность использования упаковки материалов, которые могут храниться годами. Минусом, помимо его дороговизны, считается существенное время экспозиции (несколько часов), необходимость дегазации при помощи специальной аппаратуры, что дополнительно увеличивает длительность цикла стерилизации.

Существует современный, эффективный, но весьма дорогой метод стерилизации – плазменная очистка в низкотемпературных плазменных стерилизаторах SPS. Принцип  работы этой аппаратуры основан на генерации плазмы непосредственно  вокруг стерилизуемого материала. Стерилизующим  агентом является 20 %-ный пероксид водорода. Процесс происходит в любой части камеры. Контроль температуры осуществляется инфракрасными датчиками. Стерилизация в этом случае представляет собой сухой процесс при температуре от +35 до +50 °С, что гарантирует сохранность инструментов и оборудования, чувствительного к повышенной температуре и влажности. Время стерилизации — от 90 до 120 минут. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Заключение.

Подводя итоги, следует отметить следующее. Уничтожение микроорганизмов физическими  и химическими методами, которые  используются при стерилизации медицинских  изделий, подчиняется экспоненциальному  закону. Это означает, что неизбежно  имеется конечная вероятность того, что микроорганизм может выживать независимо от степени проведенной  обработки. Для конкретной обработки  вероятность выживания определена количеством и типами микроорганизмов  и условиями их существования  до и во время обработки. Следовательно, стерильность любого изделия в ряду изделий, подвергнутых стерилизации, может выражаться только в терминах вероятности существования нестерильного изделия.

Применение  современных стерилизантов, тепловая и холодная стерилизация гибкого инструментария после каждого исследования позволяют достигать высокого уровня дезинфекции и стерильности аппаратуры. В качестве стерилизантов используют насыщенный высокотемпературный водяной пар (стерилизация паром), сухой горячий воздух (стерилизация жаром), химические вещества (стерилизация химическая), газ (стерилизация газовая), реже используют ионизирующие излучения (лучевая стерилизация), фильтрование через мелкопористые фильтры (механическая стерилизация), многократное прогревание жидкостей на водяной бане при 100 0С (дробная стерилизация) или 56 0С (тиндализация).

 

 

                          

 

 Список использованной литературы:

1. Волколаков Я.В. Общая хирургия. 1989. Глава 3: Уход за хирургическими больными.  
2. Палеев Н.Р. Справочник медицинской сестры по уходу.1980.  
3. Стручков В.И. Стручков Ю.В. Общая хирургия. 1988.  
4. Клюжев В.М.,Акимкин В.Г. Внутрибольничные инфекции и роль медицинского персонала в их профилактике.  
5. Девятов В., Рыбин Э., Петров С. О мерах борьбы с госпитальной инфекцией.

6. Колычев Н.М., Госманов Р.Г., Микробиология и иммунология: учебник для вузов - 3-е издание. – М.: Колос, 2005. – 432 с.

7.Микробиология: Учебник  дл вузов / О.Д.Сидоренко, Е.Г.Борисенко,  А.А.Ванькова, Л.И.Войнова. – М.: Инфа_М, 2005. – 287 с.

8.Современная микробиология:  Прокариоты: В 2-х т.: Пер. с англ. Т.1 / Под ред. Й.Ленгелера, Г.Древиса, Г.Шлегеля. – М.:Мир, 2005. – 656 с.

9.Современная микробиология:  Прокариоты: В 2-х т.: Пер. с англ. Т.2 / Под ред. Й.Ленгелера, Г.Древиса, Г.Шлегеля. – М.:Мир, 2005. – 496 с.

10.Степаненко П.П. Микробиология: Учебник дя вузов. - М., 2006. – 415 с.

11.Экология микроорганизмов:  учебник для вузов / Под ред. А.И.Нетрусова. – М.: Академия, 2007. – 272 с.

12.Электронный дидактический  комплекс по микробиологии и  иммунологии / В.Н. Кисленко, Н.М. Колычев, В.И. Плешакова, Е.С. Воронин, Р.Г. Госманов. – Гриф МСХ РФ, 2004. – 419с.