Автор работы: Пользователь скрыл имя, 13 Марта 2013 в 21:00, реферат
Современный этап развития гистологии начался с 1950 г., когда впервые электронный микроскоп был применен для изучения биологических объектов. Однако для современного этапа развития гистологии характерно внедрение не только электронной микроскопии, но и других методов: цито– и гистохимии, гисторадиографии и т. д. При этом обычно используется комплекс различных методов, позволяющих составить не только качественное представление об изучаемых структурах, но и получить тонкие количественные характеристики.
СРС
На тему: История развития гистологии. Медоды исследования.
Кафедра морфологических дисциплин
Выполнила: Гусейнова Эльнара.
Группа: 114”а” ОЗР
Приняла: Таимбетова Қ.Ғ.
История
развития гистологии
В истории
развития гистологии можно выделить
три основных периода: домикроскопический,
микроскопический и современный.
Домикроскопический
период (с начала
V в. до н. э. и по 1665 г.) связан с именами
Аристотеля, Галена, Везалия и других великих
ученых того времени. Данный период развития
гистологии характеризуется попытками
выделения в организмах животных и человека
неоднородных тканей с использованием
методов анатомического препарирования.
Аристотель
Гален
Вазалий
Микроскопический период – 1665 – 1950 гг. Начало этого периода связано с именем английского физика Р. Гука, который изобрел микроскоп и использовал его для систематического исследования различных, в том числе и биологических, объектов.
Р. Гук впервые ввел термин «клетка».
В результате своих исследований Т. Шванн сформулировал клеточную теорию:
1) все
растительные и животные
2) все клетки развиваются по общему принципу – из цитобластомы;
3) каждая
клетка обладает
Современные
положения клеточной теории:
1) клетка является наименьшей единицей
живого;
2) клетки животных организмов сходны по
своему строению;
3) размножение клеток происходит путем
деления исходной клетки;
4) многоклеточные организмы представляют
собой сложные ассоциации клеток и их
производных, объединенные в системы тканей
и органов и связанные между собой клеточными,
гуморальными и нервными механизмами
регуляции.
Дальнейшее совершенствование микроскопов позволило выявить в клетках более мелкие структуры:
1) пластинчатый комплекс (К. Гольджи – 1897 г.);
2) митохондрии (Э ван Бенда – 1897 г.);
3) центриоли ( Т. Бовери – 1895 г.);
4) эндоплазматическую сеть (К. Портер – 1945 г.);
5) лизосомы (К. Дюв – 1949 г.).
Органоиды клетки
Современный этап развития гистологии начался с 1950 г., когда впервые электронный микроскоп был применен для изучения биологических объектов. Однако для современного этапа развития гистологии характерно внедрение не только электронной микроскопии, но и других методов: цито– и гистохимии, гисторадиографии и т. д. При этом обычно используется комплекс различных методов, позволяющих составить не только качественное представление об изучаемых структурах, но и получить тонкие количественные характеристики. Особенно широко в настоящее время применяются различные морфометрические методы, в том числе и автоматизированная обработка полученной информации с использованием персонального компьютера.
МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ В ГИСТОЛОГИИ.
Основным методом исследования в гистологии является микроскопирование – изучение гистологических препаратов под микроскопом.
Выделяются следующие виды микроскопии:
1) световая микроскопия (наиболее распространенный вид микроскопии, при этом разрешающая способность микроскопа составляет 0,2 мкм);
2) ультрафиолетовая
микроскопия (разрешающая
3) люминисцентная
микроскопия (применяется для
определения в исследуемом
4) фазово-контрастная
микроскопия (применяется для
обнаружения и изучения
5) поляризационная
микроскопия (используется в
6) микроскопия в темном поле применяется для изучения живых объектов;
7) микроскопия
в падающем свете (
8) электронная
микроскопия (наиболее
ПРИГОТОВЛЕНИЕ ГИСТОЛОГИЧЕСКОГО ПРЕПАРАТА
Приготовление гистологического препарата включает в себя следующие этапы.
1. Взятие материала – кусочка ткани или органа. При заборе
материала необходимо выполнять следующие
правила:
1) забор материала должен проводиться
как можно раньше после смерти или забоя
животного, при возможности от живого
объекта, чтобы как можно лучше сохранить
структуру исследуемых клеток;
2) забор материала должен проводиться
острым инструментом, чтобы не травмировать
ткани;
3) толщина кусочка не должна превышать
5 мм, чтобы фиксирующий раствор смог проникнуть
на всю глубину ткани;
4) обязательно необходимо произвести
маркировку кусочка, при этом указываются
наименование органа, номер животного
или фамилия человека, дата забора.
2. Фиксация материала. Данный этап проводится для того, чтобы остановить обменные процессы в клетке и сохранить ее от распада. Для этого взятый на исследование кусочек ткани погружают в фиксирующий раствор. Раствор может быть простым (спирт или формалин) и сложным (раствор Карнуа, фиксатор Цинкера). Фиксатор вызывает денатурацию белков и сохраняет структуру клеток в состоянии, близком к прижизненному. Фиксацию можно проводить также путем замораживания – охлаждением жидким азотом или струей углекислого газа.
Обезваживание в спиртах возрастающей концентрации
3. Заливка кусочков ткани в уплотняющие среды (парафин, смолы) – или замораживание. Данный этап необходим для того, чтобы в последующем из исследуемой ткани можно было изготовить тонкий срез.
4. Приготовление срезов на микротоме или ультрамикротоме с помощью специальных ножей. После этого срезы для световой микроскопии приклеиваются на предметные стекла, а для электронной – монтируются на специальные сеточки.
Микротом
5. Окраска срезов или их контрастирование (для электронной микроскопии). Перед окраской срезов необходимо удалить уплотняющую среду – выполнить депарафирование. С помощью окраски достигается контрастность изучаемых структур. Красители можно подразделить на основные, кислые и нейтральные. Наиболее широко применяются основные красители (гематоксилин) и кислые (эозин). Часто используются и сложные красители.
Аппарат для окраски срезов
6. Просветление срезов в ксилоле и толуоле. Их заключают в смолы (бальзам и полистирол) и закрывают покровным стеклом.
После данных процедур препарат можно исследовать под световым микроскопом. Помещенные под стекло срезы для светового микроскопа могут долго храниться и многократно использоваться. Для электронной микроскопии каждый срез используется только 1 раз, при этом он фотографируется, и изучение структур ткани производится по электронограмме.